Plateforme iPSC Nantes - Cellules souches pluripotentes induites - test 2

La plateforme

La plateforme iPSC est experte dans la culture de cellules souches pluripotentes humaines. Elle est notamment dédiée à la reprogrammation de cellules adultes en cellules souches pluripotentes induites (iPSC), ainsi qu’à l’édition du génome de ces cellules ou de lignées iPSC témoins.
Les cellules iPSC présentent la capacité unique de se différencier en n’importe quel type cellulaire de l’organisme adulte. Cette propriété en fait un outil de choix pour la médecine régénérative, le développement de nouveaux traitements, la recherche pharmaceutique, ainsi que pour l’étude des mécanismes des maladies génétiques.

photo d'iPSC
iPSC ©plateforme iPSC

Créée en 2012, la Plateforme iPSC a produit plus de 250 lignées d'iPSC à destination de 80 équipes de recherche.
Depuis l’ouverture de l’édition du génome en 2024, 5 lignées d'iPSC ont pu être éditées.
En partenariat avec le CHU de Nantes, la plateforme iPSC a développé, caractérisé et mis à disposition de la communauté scientifique une lignée de cellules souches embryonnaires humaines (hESC).

Intégrée aux réseaux européens (CoReuStem) et internationaux (Coredinates) des plateformes de cellules souches pluripotentes, la plateforme iPSC partage son expertise à travers des formations proposées en local et au national

Nos expertises

  • Cellules primaires reprogrammables : Fibroblastes, PBMC, cellules amniotiques, cellules urinaires
  • Utilisation de techniques non-intégratives : Sendaï virus ou mRNA
  • Contrôles qualité réalisés sur les lignées : qPCR des gènes de pluripotence, contrôle absence du transgène SeV (le cas échéant), vérification de l'intégrité génomique, validation de la capacité des cellules à se différencier, absence mycoplasmes

culture de cellules
Reprogrammation ©NU

La plateforme iPSC propose la constitution de banques d’échantillons de cellules primaires et de cellules souches pluripotentes induites (iPSC) issues de donneurs humains.

La plateforme conseille également les équipes dans la gestion de leurs propres banques cellulaires, en particulier pour la mise en place de Master et Working Cell Banks.

 Cette étape permet de différencier la cellule souche pluripotente induite (iPSC) en une cellule spécialisée, telle qu’une cellule cardiaque, hépatique, etc

Précurseurs types neuronales, cardiaques

Vous souhaitez cultiver et/ou caractériser un organoïde ? La plateforme collabore étroitement avec des unités de recherche et d'autres plateformes :

L’utilisation du CellCelector permet d’effectuer un repiquage automatisé et de haute précision de cellules individuelles et d’organoïdes.

automate de repiquage de cellules - cell celector     photo iPSC piquée au Cell Celector
iPSC piquées au Cell Celector ©plateforme iPSC

La plateforme iPSC réalise l’édition de cellules souches pluripotentes humaines, du design expérimental à la validation des clones d’intérêts. L’édition comportant plusieurs étapes, il est possible de réaliser sur la plateforme des étapes uniques.

 A raison d’une session par an, la plateforme iPSC propose une formation complète sur 3 jours via le CNRS FORMATION ENTREPRISE.
 

Cette formation a pour objectif d’apporter les bases théoriques (9H de cours) et pratiques (13H de Travaux Pratiques) sur la culture des cellules souches pluripotentes.
Chaque stagiaire bénéficie d’un accompagnement personnalisé pour la mise en place de cette culture dans son laboratoire ainsi que pour le développement de son projet de recherche.

Publications marquantes

  1. Martin L, Maric D, Idriss S, et al. Identification of Hepatic-like EPO as a Cause of Polycythemia. N Engl J Med. 2025;392(17):1684-1697. doi:10.1056/NEJMoa241495
     
  2. Geryk M, Canac R, Forest V, et al. Generation of a patient-specific induced pluripotent stem cell line carrying the DES p.R406W mutation, an isogenic control and a DES p.R406W knock-in line. Stem Cell Res. 2024;77:103396. doi:10.1016/j.scr.2024.103396
     
  3. Warin J, Vedrenne N, Tam V, et al. In vitro and in vivo models define a molecular signature reference for human embryonic notochordal cells. iScience. 2024;27(2):109018. Published 2024 Jan 26. doi:10.1016/j.isci.2024.109018
     
  4. Delamare M, Le Roy A, Pacault M, et al. Characterization of genetic variants in the EGLN1/PHD2 gene identified in a European collection of patients with erythrocytosis. Haematologica. 2023;108(11):3068-3085. Published 2023 Nov 1. doi:10.3324/haematol.2023.282913
     
  5. Girardeau A, Atticus D, Canac R, et al. Generation of human induced pluripotent stem cell lines from four unrelated healthy control donors carrying European genetic background. Stem Cell Res. 2022;59:102647. doi:10.1016/j.scr.2021.102647
     
  6. Al Sayed ZR, Jouni M, Gourraud JB, et al. A consistent arrhythmogenic trait in Brugada syndrome cellular phenotype. Clin Transl Med. 2021;11(6):e413. doi:10.1002/ctm2.413
     
  7. Castel G, Meistermann D, Bretin B, et al. Induction of Human Trophoblast Stem Cells from Somatic Cells and Pluripotent Stem Cells. Cell Rep. 2020;33(8):108419. doi:10.1016/j.celrep.2020.108419
     
  8. Al Sayed ZR, Canac R, Cimarosti B, et al. Human model of IRX5 mutations reveals key role for this transcription factor in ventricular conduction. Cardiovasc Res. 2021;117(9):2092-2107. doi:10.1093/cvr/cvaa259
     
  9. Montibus B, Cercy J, Bouschet T, et al. TET3 controls the expression of the H3K27me3 demethylase Kdm6b during neural commitment. Cell Mol Life Sci. 2021;78(2):757-768. doi:10.1007/s00018-020-03541-8
     
  10. Colombier P, Halgand B, Chédeville C, et al. NOTO Transcription Factor Directs Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Mesendoderm Progenitors to a Notochordal Fate. Cells. 2020;9(2):509. Published 2020 Feb 24. doi:10.3390/cells9020509
     
  11. Cogné B, Bouameur JE, Hayot G, et al. A dominant vimentin variant causes a rare syndrome with premature aging. Eur J Hum Genet. 2020;28(9):1218-1230. doi:10.1038/s41431-020-0583-2
     
  12. Belbachir N, Portero V, Al Sayed ZR, et al. RRAD mutation causes electrical and cytoskeletal defects in cardiomyocytes derived from a familial case of Brugada syndrome. Eur Heart J. 2019;40(37):3081-3094. doi:10.1093/eurheartj/ehz308
     
  13. Kilens S, Meistermann D, Moreno D, et al. Parallel derivation of isogenic human primed and naive induced pluripotent stem cells. Nat Commun. 2018;9(1):360. Published 2018 Jan 24. doi:10.1038/s41467-017-02107-w
Mis à jour le 18 septembre 2025.